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一、cKO小鼠模型構建技術路線選擇
方法 | 周期 | 適用場景 | 關鍵優勢 |
CRISPR-Cas9 + HDR | 3-6個月 | 快速構建floxed小鼠 | 無需ES細胞，直接受精卵操作 |
ES細胞同源重組 | 8-12個月 | 復雜設計（如大片段floxed） | 精準度高，適合商業化品系開發 |
Cre-loxP系統 | 需兩代交配 | 組織特異性/誘導型敲除 | 時空可控性最強 |
二、cKO小鼠模型構建核心步驟詳解
1. 靶向策略設計
loxP位點插入：
選擇關鍵外顯子（通常第2-4號外顯子），兩側插入loxP序列（34 bp）。
設計原則：刪除后導致移碼突變或功能域缺失（需蛋白結構預測）。
避免干擾：確保loxP不破壞相鄰基因的啟動子或增強子。
2. 打靶載體構建（以ES細胞法為例）
5'同源臂 1.5-3kb
loxP
目標外顯子
loxP
3'同源臂 1.5-3kb
NeoR篩選標記
DTA負選標記
3. 基因修飾小鼠制備
CRISPR法：
注射混合物：Cas9 mRNA + 2條sgRNA（靶向loxP插入位點） + ssDNA供體（含loxP序列）。
優化要點：使用化學修飾的ssDNA供體提高HDR效率（如IDT的Ultramer）。
ES細胞法：
通過電轉將線性化載體轉入ES細胞，G418篩選后PCR驗證正確重組克隆。
4. floxed小鼠鑒定
基因型檢測：
引物設計：
F1: 5'-同源臂外側
R1: loxP序列內側
預期條帶：野生型（無loxP）和floxed（有loxP）差異≥100 bp。
測序驗證：確保loxP方向正確（正向重復）。
5. 與Cre小鼠交配
Cre品系選擇：
Cre類型 | 代表品系 | 應用 |
組織特異性 | Alb-Cre（肝臟） | 代謝研究 |
Nestin-Cre（神經系統） | 神經發育 | |
誘導型 | CAG-CreERT2（全身誘導） | 他莫昔芬給藥后敲除 |
發育階段特異性 | Sox2-Cre（早期胚胎） | 胚胎致死基因研究 |
交配策略：
自交
floxed/floxed
Cre陽性
F1: floxed/+ Cre+
F2: floxed/floxed Cre+
6. 敲除效率驗證
qPCR/WB：比較Cre陽性和陰性組織的基因表達。
報告基因：若設計時引入tdTomato等，可直接熒光觀察。
三、常見問題解決方案
問題 | 原因 | 優化策略 |
loxP重組失敗 | 同源臂太短或HDR效率低 | 延長同源臂至2 kb，使用HDR增強劑（如Rad51） |
背景敲除 | Cre滲漏表達 | 選擇低滲漏Cre品系（如CreERT2） |
表型不一致 | 遺傳背景混雜 | 回交至純合背景（>N6） |
四、x技術升級
雙loxP系統（如lox2272）：實現可逆敲除，避免傳統loxP的不可逆性。
CRISPR-Cas9 + 轉座子：通過PB轉座子攜帶loxP，提高插入效率（適合難靶向位點）。
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